Modalità operative
Questa procedura ha lo scopo di
definire il percorso analitico per individuare la presenza di materiale
genetico appartenente a Listeria monocytogenes mediante PCR Real Time di tipo qualitativo, in campioni
già riscontrati positivi alla presenza di Listeria spp. mediante test
microbiologici e biochimici visti nel capitolo precedente.
L’uso di primers specifici
permette di identificare Listeria monocytogenes attraverso l’impiego di primers per il
gene mpI o per l’ HLY A ovvero il gene che codifica la listeriolisina, la
tossina con potere patogeno prodotta da Listeria.
- Attrezzature e strumenti
·
cappe biologiche a flusso
laminare
·
ultracentrifuga refrigerata
·
Light Cycler 2.0
·
Light Cycler Capping Tool
·
congelatore -20°C +/- 5°C
·
congelatore -80°C
·
pipette monocanale
·
pipette eppendorf da 1,5 ml e
0,5 ml
·
capillari Light Cycler 0,2 ml
·
blocco refrigerante con
adattatori per centrifuga
·
puntali con filtro fino a 10
μl, 20 μl, 200 μl e 1000 μl
- Soluzioni e reagenti
·
acqua distillata sterile
·
InstaGene Matrix (BioRad n° cat. 732-6030)
·
LightCycler food proof Listeria
monocytogenes Detection Kit Roche
o alternativi
- Procedura
Preparare la master mix “Listeria genere”: per ogni campione, per
i controlli positivi e negativi, allestire la miscela di reazione secondo le
indicazioni della seguente tabella:
Mix di reazione per Listeria
|
||
REAGENTE
|
CONCENTRAZIONE FINALE
|
μl x 1 REAZIONE
|
Acqua distillata
sterile per PCR
|
1X
|
10 μl
|
LightCycler®
foodproof® Listeria
m. Detection mix
|
1X
|
2
μl
|
LightCycler® foodproof®
Listeria Enzyme Master mix
|
1X
|
2 μl
|
Uracil-DNA Glicosilasi
|
1X
|
1 μl
|
Volume totale
|
15 μl
|
|
Volume campione DNA
|
5 μl
|
|
Volume finale di reazione
|
20 μl
|
Tabella 1.
I parametri per la reazione
dell’ amplificazione nel termociclizzatore sono quelli della seguente tabella:
Programma per Listeria monocytogenes
|
||
FASE
|
TEMPERATURA
|
TEMPO
|
Pre-incubazione
|
37°C
|
2 min
|
Denaturazione iniziale
|
95°C
|
10 min
|
Denaturazione
|
95°C
|
0 sec
|
Annealing
|
59°C
|
59 min
|
Amplificazione
|
72°C
|
5 sec
|
Numero di cicli
|
45
|
|
Raffreddamento
|
40°C
|
30 sec
|
Tabella 2.
Rilevazione del prodotto di
amplificazione
Durante e dopo le reazioni di
amplificazione i dati, nel nostro casa vengono elaborati dal software LightCycler®
della Roche®.
- Interpretazione dei risultati
Confrontare i risultati
relativi al Controllo Interno di Amplificazione e al campione incognito: nel
caso quest’ ultimo risulti negativo per Listeria monocytogenes, il
Controllo Interno di Amplificazione deve essere positivo, per escludere gli
effetti di eventuali inibizioni o di una mancata o insufficiente estrazione.
Nei campioni positivi il Controllo Interno di Amplificazione può essere
negativo.
E’ necessario interpretare i
risultati secondo la seguente tabella:
Interpretazione
dei risultati
|
||
Listeria monocytogenes
|
Controllo di Amplificazione
|
Risultato
|
Positivo
|
Positivo
|
Positivo
|
Negativo
|
Positivo
|
Vero negativo
|
Positivo
|
Negativo
|
Positivo
|
Negativo
|
Negativo
|
Falso negative
|
Tabella 3.
- Espressione dei risultati
Ci
sono altri metodi e test per la ricerca di Listeria tramite Real Time
PCR. Le procedure si diversificano di poco rispetto a questo descritto
(detection kit Roche®) e le accomuna il fatto che per la conferma
e/o l’ individuazione del patogeno si fa
sempre alla ricerca del gene che codifica per la tossina listeriolisina che è
il HLY A.
Altri
metodi sono:
·
iQ-Check™ Real-Time PCR Kits della
BioRad
·
duplicα real time Listeria
monocytogenes detection kit
·
etc
La positività all’ analisi
indica la presenza nel campione testato di materiale genetico appartenente al
microrganismo Listeria monocytogenes.
(Anthony Scorzelli)
(Anthony Scorzelli)
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